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原理:PI 嵌入 DNA,荧光强度反映 DNA 含量,分 G0/G1、S、G2/M 期
用途:药物对细胞增殖、周期阻滞的影响
细胞消化、70% 乙醇 4℃ 固定过夜
PBS 洗,加 RNase A 37℃孵育
加 PI 染色,避光 30min
上机检测,Modfit 或 FlowJo 分析周期分布
细胞经不同处理后,70% 冰乙醇固定,RNase 消化后 PI 染色,流式细胞仪检测 DNA 含量,分析细胞周期各时期分布比例。
原理:凋亡早期膜外翻结合 Annexin V,晚期坏死 PI 入核
结果:Q3 正常,Q4 早期凋亡,Q2 晚期凋亡 / 坏死
收集细胞(上清 + 贴壁一起收)
Binding buffer 重悬
加 Annexin V 和 PI,避光 15min
上机,1h 内完成
采用 Annexin V-FITC/PI 双染法检测细胞凋亡,流式细胞仪分析早期凋亡率与总凋亡率。
探针:DCFH-DA
荧光:绿色荧光强度 ∝ ROS 水平
细胞加 DCFH-DA,37℃ 孵育 20–30min
洗细胞,流式上机测绿色荧光
以 DCFH-DA 为荧光探针检测细胞内 ROS 水平,流式细胞仪测定平均荧光强度以反映 ROS 相对含量。
探针:JC-1
红绿荧光比:红色↓、绿色↑ → 膜电位下降(凋亡相关)
采用 JC-1 染色检测线粒体膜电位,流式分析红绿荧光比值变化。
一抗直接 / 间接标记荧光
设同型对照
细胞经固定破膜(或活细胞)后,荧光标记抗体避光染色,流式检测阳性细胞比例及平均荧光强度。
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